70水浴的作用dna提取(提取rna水浴的作用)
提取rna水浴的作用
DNA比RNA稳定很多，一般情况下是很少导致RNA污染的，可能提取过程中低温操作的缘故；可采用室温离心而非4度，RNA自然降解；如果还不行的话，可在操作过程中加入1－2微升的RNase，也无需专门37度水浴，室温操作，问题自然解决。
提取dna水浴加热目的
温度较高（超过90摄氏度）时，DNA中的氢键会断裂，DNA变成两条核苷酸单链；蛋白质中的肽键在高温水浴中不会断裂
rna提取液
基于我在读研阶段收集组织标本并从中提取RNA的经验，在术中切除的组织需要立即放入RNA保护液并液氮保存，之后用trizol法液氮研磨提取，基本能保证比较好的RNA质量，如果样本离体以后没有及时置入液氮，则很难保证RNA的质量，你应该知道内源性RNA酶是什么，石蜡切片样本做做免疫组化还可以，提取RNA有点太困难了，一般来说芯片都是用新鲜组织或者细胞做的，从石蜡切片里做能不能有结果另说，肯定会有reviewer质疑的
提取rna水浴的作用是什么
水浴加热的目的是为了让DNA分理出来，更好的提取；但这么高的温度不利于下一步的实验，因此需冷却至室温。
在提取rna的过程中,为什么沸水浴加热30分钟
核苷(Nucleoside)是一类糖苷的总称。核苷是核酸和核苷酸的组成成分。核苷都是由D-核糖或D-Z-脱氧核糖与嘧啶碱或嘌呤碱缩合而成。核苷一般为无色结晶，不溶于普通有机溶剂，易溶于热水，熔点为160~240℃。由D-核糖生成的核苷称核糖核苷，参与RNA组成，由D-α-脱氧核糖生成的核苷称脱氧核糖核苷，参与DNA组成。
提取rna用什么水
RNA抽取一般使用Trizol法抽提: Trizol是一种总RNA抽提试剂，内含异硫氰酸胍等物质，能迅速裂解细胞，抑制细胞释放出的核酸酶活性。目前常用Trizol法进行提取组织或细胞中的RNA。 Trizol作用原理: 在匀质化或溶解样品中，Trizol试剂可保持RNA的完整性，同时能破坏细胞及溶解细胞成分。加入氯仿离心后，裂解液分层成水相和有机相。RNA存在于水相中。 水相转移后，RNA通过异丙醇沉淀回收。移去水相后，用乙醇可从中间相沉淀得到DNA，加入异丙醇沉淀可从有机相得到蛋白质。
rna提取depc水的作用
溶菌酶比较稳定的，酸碱耐受性都挺好，所以直接用TE溶解就可以了，配成20mg/ml的储存浓度，使用的时候终浓度1-2mg/ml就行了。
tris直接用DEPC水配就可以了。
提取rna水加多怎么重新沉淀
提取基因组dna过程中，如何去除蛋白质，多糖和脂类等生物大分子 不同生物（植物、动物、微生物）的基因组DNA的提取方法有所不同; 不同种类或同一种类的不同组织因其细胞结构及所含的成分不同，分离方法也有差 异。在提取某种特殊组织的DNA时必须参照文献和经验建立相应的提取方法, 以获得可用的DNA大分子。
尤其是组织中的多糖和酶类物质对随后的酶切、PCR反应等有较强的抑制作用,因此用富含这类物质的材料提取基因组DNA时, 应考虑除去多糖和酚类物质。 本实验以水稻幼苗为材料,学习基因组DNA提取的一般方法。 DNA 一、材料 水稻幼苗 二、设备 移液器，冷冻高速离心机，台式高速离心机，水浴锅，陶瓷研钵，50ml离 心管（有盖）及5ml和1.5ml离心管，弯成钩状的小玻棒。 三、试剂 1、提取缓冲液?：100mmol/L Tris?Cl, pH8.0, 20mmol/L EDTA, 500mmol/L NaCl, 1.5% SDS。 2、提取缓冲液?：18.6g葡萄糖，6.9g二乙基二硫代碳酸钠，6.0gPVP，240ul巯基乙醇，加水至300ml。
3、80:4:16/氯仿:戊醇:乙醇 4、 RnaseA母液：配方见第一章。
5、其它试剂：液氮、异丙醇、TE缓冲液，无水乙醇、70%乙醇、3mol/L NaAc。 四、操作步骤：
（一）水稻幼苗或其它禾木科植物基因组DNA提取 1. 在50ml离心管中加入20ml提取缓冲液?, 60?水浴预热。
2. 水稻幼苗或叶子5-10g, 剪碎, 在研钵中加液氮磨成粉状后立即倒入预热 的离心管中, 剧烈摇动混匀, 60?水浴保温30-60分钟(时间长,DNA产量高), 不时摇动。
3. 加入20ml氯仿/戊醇/乙醇溶液, 颠倒混匀(需带手套, 防止损伤皮肤)，室温下静置5-10分钟, 使水相和有机相分层(必要时可重新混匀)。
4. 室温下5000rpm离心5分钟。
5. 仔细移取上清液至另一50ml离心管,加入1倍体积异丙醇,混匀,室温下放置片刻即出现絮状DNA沉淀。 6. 在1.5ml eppendorf中加入1ml TE。用钩状玻璃棒捞出DNA絮团,在干净吸水纸上吸干,转入含TE的离心管中,DNA很快溶解于TE。 7. 如DNA不形成絮状沉淀,则可用5000rpm离心5分钟, 再将沉淀移入TE管中。这样收集的沉淀,往往难溶解于TE,可在60?水浴放置15分钟以上，以帮助溶解。 8. 将DNA溶液3000rpm离心5分钟, 上清液倒入干净的5ml离心管。 9. 加入5μl RNaseA(10μg/μl), 37? 10分钟, 除去RNA(RNA对DNA的操作、分析一般无影响，可省略该步骤）。 10. 加入1/10体积的3mol/L NaAc及2×体积的冰乙醇,混匀,-20?放置20分钟左右,DNA形成絮状沉淀。